产品货号:
GS2300
中文名称:
定点突变试剂盒
英文名称:
Site-directed Mutagenesis Kit
产品规格:
10T|20T
发货周期:
1~3天
产品价格:
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定点突变试剂盒可用于点突变,核苷酸替换和删除或者插入单一或多个相邻核苷酸。本试剂盒可简单、快速和高效地引入正确的目的突变,可将多达12个寡苷酸插入和/或删除到双链的长达8kb的质粒中。整个过程(包括转化)可在3小时内完成。
为得到目的突变位点,需设计两个含有中心突变位点的互补诱变引物。这两个引物在目标载体上退火到相反的链上,然后Pfu DNA Polymerase利用引物扩增整个目标载体。PCR扩增产生大量带缺刻的开环突变质粒。然后用Dpn I限制性内切酶消化残留的甲基化模板和任何半甲基化的DNA。带缺刻的DNA载体含有目标突变位点,被转化到DH5α感受态细胞后载体的缺刻得到修复。
2.68kb的pUC19对照质粒的Hind III限制性酶切位点序列的“AG”发生移码突变,突变位点在lacZα基因上。突变的对照质粒在含有X-galactosidase (X-gal)的平板上表现为白色菌落。对照质粒同时含有氨苄青霉素抗性;因此筛选时,使E.coli生长在含有氨苄青霉素(和X-gal)的平板上。另外,pUC19对照质粒不能被Hind III酶切。根据对照实验,pUC19对照质粒的回复突变可被Hind III切割。
组分 | 10T | 20T |
10x Pfu Buffer with MgSO4 | 200μL | 400μL |
25mM MgSO4 Solution | 200μL | 400μL |
10mM dNTP Mix | 20μL | 40μL |
Pfu DNA Polymerase(2.5U/μL) | 15μL | 30μL |
Dpn I(10U/μL) | 12μL | 24μL |
pUC19 White Control Plasmid(5ng/μL) | 20μL | 40μL |
Control Forward Primer(10μM) | 15μL | 30μL |
Control Reverse Primer(10μM) | 15μL | 30μL |
Sterilized ddH2O | 1mL | 2mL |
保存:-20℃
- 突变引物设计原则
- 突变引物对应当含有预期的突变位点并退火到目标载体的相反链上。
- 引物应为30~45个碱基,解链温度(Tm)在75℃至85℃。
- 一般以突变(替换、删除、插入)的碱基为中心,加上两边长度为11~21个碱基左右一段正确序列。
- 引物GC含量至少为40%,并且以G或C结束。
- 如要获得更多关于突变引物设计的信息,请参阅PrimerX,这是个免费的自动设计突变引物的在线工具。
- PrimerX设计的的重叠延伸突变引物也适用于本试剂盒。
- 突变引物对应当含有预期的突变位点并退火到目标载体的相反链上。
- 突变PCR
- 根据下表准备对照组的反应体系
成分 用量 10×Pfu Buffer with MgSO4 5μL 10mM dNTP Mix 1μL Control Forward Primer(10μM) 1μL Control reverse Primer(10μM) 1μL pUC19 White Control Plasmid(5ng/μL) 1μL Pfu DNA Polymerase(2.5U/μL) 1.2μL Sterilized ddH2O 至50μL - 根据下表准备样品的反应体系
成分 用量 10×Pfu Buffer with MgSO4 5μL 10mM dNTP Mix 1μL Forward Primer(10μM) 1μL Reverse Primer(10μM) 1μL Template Plasmid(10ng/μL) 0.5~1μL Pfu DNA Polymerase(2.5U/μL) 1.2μL Sterilized ddH2O 至50μL - 将样品放入循环仪并根据下列程序开始PCR
步骤 温度 时间 循环次数 预变性 95℃ 3min 1 变性 95℃ 30s 12~18 退火 60℃ 1min 延伸 68℃ 2min/kb 最终延伸 68℃ 10min 1
- 根据下表准备对照组的反应体系
- Dpn I消化扩增产物
直接加入1μL Dpn I限制性酶(10U/μl)到每个扩增反应中。温和并彻底地混匀每个反应混合液,迅速旋下反应混合液,37℃孵育1h,消化亲本模板。 - 转化和分析
- 每个转化反应均需冰上融解100μL DH5α感受态细胞。
- 直接将5~10μL Dpn I消化产物加入到DH5α感受态细胞并用移液枪温和混匀。
- 冰上孵育30min。
- 42℃热激90s,立即冰浴2~3min。
- 将LB培养基(400~600μL)加入细胞,温和混匀,37℃振荡培养1h,转速为220rpm。
- 取100~200μL细胞涂布到琼脂平板上,其中含有适合质粒载体抗性的抗生度。作为突变和转化的对照组,将细胞涂布到含有氨苄的LB琼脂平板上,平板添加有X-gal和IPTG。
- 37℃过夜培养。.
- 选择3~5个菌落,通过质粒抽提、PCR或测序分析结果。DNA测序是为了证明突变成功,并且基因的其它区域不含有另外的突变。
- 每个转化反应均需冰上融解100μL DH5α感受态细胞。
- 突变效率
- 用这种方法获得的突变效率往往高于80%。
- 白色对照pUC19突变后转化得到的预期菌落数≥100个。在含有IPTG和X-gal的琼脂平板上的菌落超过80%表现为蓝色。
- 用这种方法获得的突变效率往往高于80%。
问题 | 可能的原因 | 建议解决方法 |
PCR产物不可见 | 质粒DNA模板不足 | 提高PCR诱变中质粒DNA模板的量。每50μL反应体系使用多达50ng的质粒DNA。 |
质粒模板质量差 | 琼脂糖凝胶电泳分析DNA模板的质量和数量。如果质粒DNA是完整的,应存在一条高分子量的亮带,代表DNA超螺旋的拓扑结构,开环较少并且没有线性结构。 | |
引物不合适 | 检查引物设计,纯度及浓度。进行梯度实验找出引物的最佳退火温度。 | |
平板上只有几个菌落甚至没有 | 感受态细胞转化效率低 | 通过转化超螺旋质粒,检查细胞的转化效率。 |
转化到感受态细胞的DpnI消化产物少 | 乙醇沉淀Dpn I消化的PCR产物,并在转化前用更小体积的水重悬产物。 | |
琼脂平板上涂布的转化细胞较少 | 请低速离心富集转化细胞后再涂布到琼脂平板上。 | |
突变位点多导致菌落数少 | 菌落少的现象是常见的,特别是产生大量突变时。但是,大多数含有突变质粒的菌落仍会长出。 | |
抗生素浓度过高 | 请使用适当浓度的抗生素 | |
样品诱变效率低 | 亲本质粒DNA未完全消化 | 留出足够时间使Dpn I能完全消化亲本模板;如果DNA模板过多则重复消化过程。 |
引物可能形成二级结构抑制诱变反应 | 将退火温度提高到68℃以减少二级结构的形成,并提高诱变效率。 |
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