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定点突变试剂盒图片
产品货号:
GS2300
中文名称:
定点突变试剂盒
英文名称:
Site-directed Mutagenesis Kit
产品规格:
10T|20T
发货周期:
1~3天
产品价格:
询价

定点突变试剂盒可用于点突变,核苷酸替换和删除或者插入单一或多个相邻核苷酸。本试剂盒可简单、快速和高效地引入正确的目的突变,可将多达12个寡苷酸插入和/或删除到双链的长达8kb的质粒中。整个过程(包括转化)可在3小时内完成。


为得到目的突变位点,需设计两个含有中心突变位点的互补诱变引物。这两个引物在目标载体上退火到相反的链上,然后Pfu DNA Polymerase利用引物扩增整个目标载体。PCR扩增产生大量带缺刻的开环突变质粒。然后用Dpn I限制性内切酶消化残留的甲基化模板和任何半甲基化的DNA。带缺刻的DNA载体含有目标突变位点,被转化到DH5α感受态细胞后载体的缺刻得到修复。


2.68kb的pUC19对照质粒的Hind III限制性酶切位点序列的“AG”发生移码突变,突变位点在lacZα基因上。突变的对照质粒在含有X-galactosidase (X-gal)的平板上表现为白色菌落。对照质粒同时含有氨苄青霉素抗性;因此筛选时,使E.coli生长在含有氨苄青霉素(和X-gal)的平板上。另外,pUC19对照质粒不能被Hind III酶切。根据对照实验,pUC19对照质粒的回复突变可被Hind III切割。




组分10T20T
10x Pfu Buffer with MgSO4200μL400μL
25mM MgSO4 Solution200μL400μL
10mM dNTP Mix20μL40μL
Pfu DNA Polymerase(2.5U/μL)15μL30μL
Dpn I(10U/μL)12μL24μL
pUC19 White Control Plasmid(5ng/μL)20μL40μL
Control Forward Primer(10μM)15μL30μL
Control Reverse Primer(10μM)15μL30μL
Sterilized ddH2O1mL2mL

保存:-20℃


  • 突变引物设计原则
    • 突变引物对应当含有预期的突变位点并退火到目标载体的相反链上。
    • 引物应为30~45个碱基,解链温度(Tm)在75℃至85℃。
    • 一般以突变(替换、删除、插入)的碱基为中心,加上两边长度为11~21个碱基左右一段正确序列。
    • 引物GC含量至少为40%,并且以G或C结束。
    • 如要获得更多关于突变引物设计的信息,请参阅PrimerX,这是个免费的自动设计突变引物的在线工具。
    • PrimerX设计的的重叠延伸突变引物也适用于本试剂盒。
  • 突变PCR
    • 根据下表准备对照组的反应体系
      成分用量
      10×Pfu Buffer with MgSO45μL
      10mM dNTP Mix1μL
      Control Forward Primer(10μM)1μL
      Control reverse Primer(10μM)1μL
      pUC19 White Control Plasmid(5ng/μL)1μL
      Pfu DNA Polymerase(2.5U/μL)1.2μL
      Sterilized ddH2O至50μL
    • 根据下表准备样品的反应体系
      成分用量
      10×Pfu Buffer with MgSO45μL
      10mM dNTP Mix1μL
      Forward Primer(10μM)1μL
      Reverse Primer(10μM)1μL
      Template Plasmid(10ng/μL)0.5~1μL
      Pfu DNA Polymerase(2.5U/μL)1.2μL
      Sterilized ddH2O至50μL
    • 将样品放入循环仪并根据下列程序开始PCR
      步骤温度时间循环次数
      预变性95℃3min1
      变性95℃30s12~18
      退火60℃1min
      延伸68℃2min/kb
      最终延伸68℃10min1
  • Dpn I消化扩增产物
    直接加入1μL Dpn I限制性酶(10U/μl)到每个扩增反应中。温和并彻底地混匀每个反应混合液,迅速旋下反应混合液,37℃孵育1h,消化亲本模板。
  • 转化和分析
    • 每个转化反应均需冰上融解100μL DH5α感受态细胞。
    • 直接将5~10μL Dpn I消化产物加入到DH5α感受态细胞并用移液枪温和混匀。
    • 冰上孵育30min。
    • 42℃热激90s,立即冰浴2~3min。
    • 将LB培养基(400~600μL)加入细胞,温和混匀,37℃振荡培养1h,转速为220rpm。
    • 取100~200μL细胞涂布到琼脂平板上,其中含有适合质粒载体抗性的抗生度。作为突变和转化的对照组,将细胞涂布到含有氨苄的LB琼脂平板上,平板添加有X-gal和IPTG。
    • 37℃过夜培养。.
    • 选择3~5个菌落,通过质粒抽提、PCR或测序分析结果。DNA测序是为了证明突变成功,并且基因的其它区域不含有另外的突变。
  • 突变效率
    • 用这种方法获得的突变效率往往高于80%。
    • 白色对照pUC19突变后转化得到的预期菌落数≥100个。在含有IPTG和X-gal的琼脂平板上的菌落超过80%表现为蓝色。



问题可能的原因建议解决方法
PCR产物不可见质粒DNA模板不足提高PCR诱变中质粒DNA模板的量。每50μL反应体系使用多达50ng的质粒DNA。
质粒模板质量差琼脂糖凝胶电泳分析DNA模板的质量和数量。如果质粒DNA是完整的,应存在一条高分子量的亮带,代表DNA超螺旋的拓扑结构,开环较少并且没有线性结构。
引物不合适检查引物设计,纯度及浓度。进行梯度实验找出引物的最佳退火温度。
平板上只有几个菌落甚至没有感受态细胞转化效率低通过转化超螺旋质粒,检查细胞的转化效率。
转化到感受态细胞的DpnI消化产物少乙醇沉淀Dpn I消化的PCR产物,并在转化前用更小体积的水重悬产物。
琼脂平板上涂布的转化细胞较少请低速离心富集转化细胞后再涂布到琼脂平板上。
突变位点多导致菌落数少菌落少的现象是常见的,特别是产生大量突变时。但是,大多数含有突变质粒的菌落仍会长出。
抗生素浓度过高请使用适当浓度的抗生素
样品诱变效率低亲本质粒DNA未完全消化留出足够时间使Dpn I能完全消化亲本模板;如果DNA模板过多则重复消化过程。
引物可能形成二级结构抑制诱变反应将退火温度提高到68℃以减少二级结构的形成,并提高诱变效率。

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